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單克隆抗體的克隆化方法有哪些?

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   克隆的時(shí)間一般說(shuō)來(lái)越早越好。因為在這個(gè)時(shí)期各種雜交瘤細胞同時(shí)旺盛生長(cháng),互相爭奪營(yíng)養和空間,而產(chǎn)生抗體的細胞有被淹沒(méi)和淘汰的可能。但克隆時(shí)間也不宜太早,太早細胞性狀不穩定,數量少也易丟失。
  克隆化的陽(yáng)性雜交瘤細胞,經(jīng)過(guò)一段時(shí)期培養之后,也還會(huì )因為細胞突變或特定染色體的丟失,使部分細胞喪失產(chǎn)生抗體的能力,所以需要再次或多次克隆化培養??寺』螖档亩嗌儆煞置谀芰娙鹾涂乖拿庖咝詮娙醵鴽Q定。一般說(shuō),免疫性強的抗原克隆次數可少一些,但至少要3~5次克隆才能穩定。
  克隆化的方法很多,包括有軟瓊脂克隆化、顯微操作法、熒光激活分離法及限稀釋法等。
 ?。ㄒ唬┸洯傊寺』?/div>
  借助撒在軟瓊脂上單個(gè)細胞定位生長(cháng),而達到克隆化,具體操作如下:
  1.配2.5%的瓊脂糖30ml,水浴溶化后,移入45℃水浴中。
  2.將117ml*DMEM液和3ml 10倍濃度的DMEM液混合,置45℃水浴預熱。
  3.將瓊脂糖與DMEM液混合,即為含0.5%瓊脂糖的*DMEM液,并加75×108 脾細胞。
  4.每塊平皿加10ml,于室溫中凝固。
  5.DMEM中的細胞與DMEM—瓊脂1:1混合,將細胞瓊脂混合物2ml鋪于凝固的平板上,使其全部覆蓋。
  6.放入CO2箱飽和濕度,37℃培養10天。
  7.用PBS配制0.6%瓊脂糖,于沸水浴溶解后,置45℃,在保溫情況下取一試管,迅速加入0.1ml 25%羊紅血球,0.2ml豚鼠補體,2.7ml 0.6%瓊脂糖。
  8.用3ml瓊脂糖—羊紅血球混合液覆蓋克隆。于37℃CO2箱孵育1h~2h。從克隆上部溶解羊紅血球的溶血范圍,可篩選抗羊紅血球Ig。
 ?。ǘ╋@微鏡操作法
  在直徑6cm培養皿中,加入1ml 1.0×108細胞懸液放置5%CO2飽和濕度,37℃溫箱中放置30min以上,倒置顯微鏡下,尋找那些與周?chē)嗑嗌踹h的單個(gè)細胞,將毛細管口(一頭有直角彎頭毛細管,一頭連接一尺長(cháng)乳膠管,用口控制液體進(jìn)入)水平置放于液面上,左右微動(dòng),直到看見(jiàn)管口,對準細胞,吸入毛細管,將管中細胞移到預先加有2.0×104~5.0×104飼養細胞96孔板內,培養后,即可獲得單個(gè)細胞形成的克隆。
 ?。ㄈ晒饧せ罘蛛x法
  用一種熒光激活細胞分類(lèi)器(Fluorescein Activafed Cell Sorter,FACS)。其基本原理是:將細胞經(jīng)熒光抗體染色后,經(jīng)噴嘴形成單個(gè)細胞的線(xiàn)形液滴,在萊塞光激發(fā)下,熒光素發(fā)射熒光,此信號由光電倍增管接收,再結合細胞形態(tài)大小產(chǎn)生光散射信號,經(jīng)電腦處理,產(chǎn)生信號并與預定的信號對比,根據細胞熒光強度及細胞大小不同,將細胞分成不同級別,在電場(chǎng)中發(fā)生偏離,而分別收集于不同容器中。
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  1.材料
 ?。?)微量培養盤(pán),盤(pán)內各孔于克隆化前一天培養小鼠腹腔細胞(即飼養細胞)每孔2萬(wàn)~4萬(wàn)。
 ?。?)HT培養基
  2.操作方法
 ?。?)取出抗體陽(yáng)性孔細胞,用HT培養液制成細胞懸液。并取樣進(jìn)行臺盼蘭染色,計數。
 ?。?)用HT培養液將細胞稀釋成200個(gè)/ml、40個(gè)/ml、20個(gè)/ml和的懸液。
 ?。?)用吸管將細胞懸液分別種入微量培養盤(pán),每孔0.05ml,細胞含量分別為10個(gè)/孔、2個(gè)/孔、1個(gè)/孔和0.5個(gè)/孔。
 ?。?)5%CO2飽和濕度,37℃培養。
 ?。?)每天用倒置顯微鏡觀(guān)察克隆生長(cháng)情況,選擇只有一個(gè)集落生長(cháng)的孔,棄掉兩個(gè)以上和沒(méi)有細胞生長(cháng)的孔。
 ?。?)克隆大量繁殖后,布滿(mǎn)孔底的1/3~1/2時(shí),測培養液抗體。
 ?。?)抗體陽(yáng)性孔細胞,移到有飼養層的組織培養瓶中,并傳2~4代就可以脫離飼養細胞,建成克隆株。
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